ATIVIDADE ANTIFÚNGICA DE EXTRATOS DE PLANTAS MEDICINAIS FRENTE A Cryptococcus neoformans

REVISÃO SISTEMÁTICA

Visualizações: 216

Autores

  • Fabricio da Silva Sperandio grad. medicina, CCSD, Universidade Federal do Acre, Rio Branco - AC
  • Jaine Rodrigues da Rocha PPGCSAO, CCBN, Universidade Federal do Acre, Rio Branco - AC https://orcid.org/0000-0003-3681-7322
  • Breno Saldanha Spinelli grad. medicina, CCSD, Universidade Federal do Acre, Rio Branco - AC
  • Karina Lisita PPGCSAO, CCBN, Universidade Federal do Acre, Rio Branco - AC
  • Anselmo Fortunato Ruiz Rodriguez Laboratório de Nanobiotecnologia/BIONORTE/Universidade Federal do Acre, Rio Branco - AC https://orcid.org/0000-0002-3034-183X
  • Luis Eduardo Maggi Laboratório de Biofísica/CCBN/Universidade Federal do Acre, Rio Branco - AC https://orcid.org/0000-0003-3931-7921

DOI:

https://doi.org/10.54038/ms.v4i1.55

Palavras-chave:

Ação antifúngica, Criptococose, Cryptococcus neoformans, Plantas medicinais, Extratos Vegetais

Resumo

A utilização de plantas no tratamento de doenças é antiga e as observações populares sobre sua utilização e eficácia, podem fornecer informações terapêuticas importantes e cooperar para o desenvolvimento de estudos bem-sucedidos sobre seus efeitos. Apesar do crescente progresso da microbiologia, a criptococose é uma micose oportunista que ainda acomete milhares de pessoas, principalmente pacientes imunocomprometidos. O objetivo do presente trabalho foi realizar uma revisão da literatura científica das principais plantas medicinais com atividades antifúngicas frente a Cryptococcus neoformans. Foram utilizadas as bases de dados Pubmed e Scielo, sendo utilizado os seguintes descritores em Ciências da Saúde: “Medicinal plants” and “Antifungal” and “Cryptococcus”. Ao todo, 22 artigos contemplaram os critérios de inclusão, sendo avaliadas 48 espécies de plantas, de 35 famílias distintas, com 104 fórmulas farmacêuticas produzidas a partir de diferentes metabólitos isolados. Duas espécies obtiveram a melhor atividade antifúngica contra C. neoformans (CIM de 0,63 µg/ml), sendo elas: Gentiana crassicaulis da família Gentianaceae e Prosopis glandulosa da família Leguminosae.

Referências

Mahomoodally MF. Traditional medicines in Africa: An appraisal of ten potent African medicinal plants. Vol. 2013, Evidence-based Complementary and Alternative Medicine. 2013. DOI: https://doi.org/10.1155/2013/617459

Atanasov AG, Waltenberger B, Pferschy-Wenzig EM, Linder T, Wawrosch C, Uhrin P, et al. Discovery and resupply of pharmacologically active plant-derived natural products: A review. Vol. 33, Biotechnology Advances. Elsevier Inc.; 2015. p. 1582–614. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2015.08.001

Avigliano E, Rosso JJ, Lijtmaer D, Ondarza P, Piacentini L, Izquierdo M, et al. Biodiversity and threats in non-protected areas: A multidisciplinary and multi-taxa approach focused on the Atlantic Forest. Heliyon. 2019;5(8). DOI: https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e02292

Sousa R. Cryptococcus neoformans E Cryptococcus gattii: quimiotipagem e correlação com criptococose em hospitais públicos de João Pessoa-PB. 2013.

Lima FR. Espécies de Cryptococcus obtidas de isolados clínicos e ambientais da cidade de Campinas, SP: genotipagem e avaliação da suscetibilidade in vitro frente a agentes antifúngicos isolados e em diferentes combinações. 2014;

Brower JL. The Threat and Response to Infectious Diseases (Revised). Microb Ecol. 2018;76(1):19–36. DOI: https://doi.org/10.1007/s00248-016-0806-9

Colombo G, Táparo C V., Araújo EC, Makatu MY, Santos FS, Marinho M. Caracterização bioquímica e molecular de Cryptococcus spp. isolados de excretas ambientais de pombos (Columba livia domestica). Arq Bras Med Vet Zootec. 2015;67(6):1639–45. DOI: https://doi.org/10.1590/1678-4162-7753

Chaturvedi V, Chaturvedi S. Cryptococcus gattii: A resurgent fungal pathogen. Vol. 19, Trends in Microbiology. Elsevier Ltd; 2011. p. 564–71. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tim.2011.07.010

Lima CT de, Klafke GB, Xavier MO. Cryptococcus spp. em excretas de Columba livia (pombos domésticos) provenientes de um hospital universitário no Sul do Brasil. Arq Inst Biol (Sao Paulo). 2016;82(0). DOI: https://doi.org/10.1590/1808-1657001072013

Liu TB, Perlin DS, Xue C. Molecular mechanisms of cryptococcal meningitis. Vol. 3, Virulence. Taylor and Francis Inc.; 2012. p. 173–81. DOI: https://doi.org/10.4161/viru.18685

Yang C, Huang Y, Zhou Y, Zang X, Deng H, Liu Y, et al. Cryptococcus escapes host immunity: What do we know? Vol. 12, Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. Frontiers Media S.A.; 2022. DOI: https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.1041036

Galvão TF, Pereira MG. Revisões sistemáticas da literatura: passos para sua elaboração. Epidemiologia e Serviços de Saúde. 2014;23(1):183–4. DOI: https://doi.org/10.5123/S1679-49742014000100018

Ngouana T, Mbouna C, Kuipou R, Tchuenmogne M, Zeuko’o E, Ngouana V, et al. Potent and Synergistic Extract Combinations from Terminalia Catappa, Terminalia Mantaly and Monodora tenuifolia Against Pathogenic Yeasts. Medicines. 2015;2(3):220–35. DOI: https://doi.org/10.3390/medicines2030220

Adamu M, Naidoo V, Eloff JN. Some southern African plant species used to treat helminth infections in ethnoveterinary medicine have excellent antifungal activities. BMC Complement Altern Med. 2012;12. DOI: https://doi.org/10.1186/1472-6882-12-213

Mokoka TA, McGaw LJ, Eloff JN. Antifungal efficacy of ten selected South African plant species against Cryptococcus neoformans. Pharm Biol. 2010;48(4):397–404. DOI: https://doi.org/10.3109/13880200903150393

Lawson SK, Sharp LG, Powers CN, McFeeters RL, Satyal P, Setzer WN. Volatile compositions and antifungal activities of native american medicinal plants: Focus on the asteraceae. Plants. 2020;9(1). DOI: https://doi.org/10.3390/plants9010126

Violante IMP, Hamerski L, Silva Garcez W, Batista AL, Rodrigues Chang M, Pott VJ, et al. ANTIMICROBIAL ACTIVITY OF SOME MEDICINAL PLANTS FROM THE CERRADO OF THE CENTRAL-WESTERN REGION OF BRAZIL. Brazilian Journal of Microbiology. 2012;1302–8. DOI: https://doi.org/10.1590/S1517-83822012000400009

Albernaz LC, de Paula JE, Romero GAS, Silva M do RR, Grellier P, Mambu L, et al. Investigation of plant extracts in traditional medicine of the Brazilian Cerrado against protozoans and yeasts. J Ethnopharmacol. 2010;131(1):116–21. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.06.011

Nondo RS, Mbwambo ZH, Kidukuli AW, Innocent EM, Mihale MJ, Erasto P, et al. Larvicidal, antimicrobial and brine shrimp activities of extracts from Cissampelos mucronata and Tephrosia villosa from coast region, Tanzania. BMC Complement Altern Med. 2011;11. DOI: https://doi.org/10.1186/1472-6882-11-33

Cardoso NNR, Alviano CS, Blank AF, Arrigoni-Blank M de F, Romanos MT V., Cunha MML, et al. Anti-cryptococcal activity of ethanol crude extract and hexane fraction from Ocimum basilicum var. Maria bonita: Mechanisms of action and synergism with amphotericin B and Ocimum basilicum essential oil. Pharm Biol. 2017;55(1):1380–8. DOI: https://doi.org/10.1080/13880209.2017.1302483

Ferreira FPS, Morais SR, Bara MTF, Conceição EC, Paula JR, Carvalho TC, et al. Eugenia calycina Cambess extracts and their fractions: Their antimicrobial activity and the identification of major polar compounds using electrospray ionization FT-ICR mass spectrometry. J Pharm Biomed Anal. 2014;99:89–96. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jpba.2014.07.003

Xu M, Zhang YJ, Li XC, Jacob MR, Yang CR. Steroidal saponins from fresh stems of Dracaena angustifolia. J Nat Prod. 2010;73(9):1524–8. DOI: https://doi.org/10.1021/np100351p

Bhattacharya AK, Chand HR, John J, Deshpande M V. Clerodane type diterpene as a novel antifungal agent from Polyalthia longifolia var. pendula. Eur J Med Chem. 2015;94:1–7. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2015.02.054

Levorato Vinche AD, de-La-Cruz-Chacón I, González-Esquinca AR, de Fátima da Silva J, Ferreira G, dos Santos DC, et al. Antifungal activity of liriodenine on agents of systemic mycoses, with emphasis on the genus paracoccidioides. Journal of Venomous Animals and Toxins Including Tropical Diseases. 2020;26. DOI: https://doi.org/10.1590/1678-9199-jvatitd-2020-0023

Song CW, Lunga PK, Qin XJ, Cheng GG, Gu JL, Liu YP, et al. New antimicrobial pregnane glycosides from the stem of Ecdysanthera rosea. Fitoterapia. 2014;99(1):267–75. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fitote.2014.10.008

Rodrigues de Araújo A, Iles B, de Melo Nogueira K, Dias J do N, Plácido A, Rodrigues A, et al. Antifungal and anti-inflammatory potential of eschweilenol C-rich fraction derived from Terminalia fagifolia Mart. J Ethnopharmacol. 2019;240. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2019.111941

Ren S, Deng K, Qiu S, Wang M, Avula B, Tripathi SK, et al. Identification of Antifungal Bisphosphocholines from Medicinal Gentiana Species. J Nat Prod. 2020;83(10):3207–11. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.0c00584

Samoylenko V, Ashfaq MK, Jacob MR, Tekwani BL, Khan SI, Manly SP, et al. Indolizidine, antiinfective and antiparasitic compounds from Prosopis glandulosa var. glandulosa. J Nat Prod. 2009;72(1):92–8. DOI: https://doi.org/10.1021/np800653z

Rahman AA, Samoylenko V, Jacob MR, Sahu R, Jain SK, Khan SI, et al. Antiparasitic and antimicrobial indolizidines from the leaves of Prosopis glandulosa var glandulosa. Planta Med. 2011;77(14):1639–43. DOI: https://doi.org/10.1055/s-0030-1270906

Wen L, Haddad M, Fernández I, Espinoza G, Ruiz C, Neyra E, et al. Actividad antifúngica de cuatro plantas usadas en la medicina tradicional peruana. Aislamiento de 3’-formil-2’,4’,6’-trihidroxidihidrochalcona, principio activo de Psidium acutangulum. Vol. 77, Rev Soc Quím Perú. 2011.

Wang WJ, Liu CC, Li YT, Li MQ, Fu YT, Li XC, et al. Antifungal and Antibiofilm In Vitro Activities of Ursolic Acid on Cryptococcus neoformans. Curr Microbiol. 2022;79(10). DOI: https://doi.org/10.1007/s00284-022-02992-5

Hossain MA, Biva IJ, Kidd SE, Whittle JD, Griesser HJ, Coad BR. Antifungal activity in compounds from the australian desert plant Eremophila alternifolia with potency against Cryptococcus spp. Antibiotics. 2019;8(2). DOI: https://doi.org/10.3390/antibiotics8020034

Ogunwande IA, Olawore NO, Ekundayo O, Walker TM, Schmidt JM, Setzer WN. Studies on the essential oils composition, antibacterial and cytotoxicity of Eugenia uniflora L. International Journal of Aromatherapy. 2005;15(3):147–52. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijat.2005.07.004

Rufin Marie T, Mbetyoumoun Mfouapon H, Madiesse Kemgne E, Jiatsa Mbouna C, Tsouh Fokou P, Sahal D, et al. Anti-Plasmodium falciparum Activity of Extracts from 10 Cameroonian Medicinal Plants. Medicines. 2018;5(4):115. DOI: https://doi.org/10.3390/medicines5040115

Eloff JN. Which extractant should be used for the screening and isolation of antimicrobial components from plants? Vol. 60, Journal of Ethnopharmacology. 1998. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-8741(97)00123-2

Mbouna CDJ, Kouipou RMT, Keumoe R, Tchokouaha LRY, Fokou PVT, Tali BMT, et al. Potent antiplasmodial extracts and fractions from Terminalia mantaly and Terminalia superba. Malar J. 2018;17(1). DOI: https://doi.org/10.1186/s12936-018-2298-1

Bona EAM De, Pinto FG da S, Fruet TK, Jorge TCM, Moura AC de. Comparação de métodos para avaliação da atividade antimicrobiana e determinação da concentração inibitória mínima (cim) de extratos vegetais aquosos e etanólicos. Arq Inst Biol (Sao Paulo). 2014;81(3):218–25. DOI: https://doi.org/10.1590/1808-1657001192012

Downloads

Publicado

02/02/2024

Como Citar

Sperandio, F. da S., Rocha, J. R. da, Spinelli, B. S., Lisita, K., Rodriguez, A. F. R., & Maggi, L. E. (2024). ATIVIDADE ANTIFÚNGICA DE EXTRATOS DE PLANTAS MEDICINAIS FRENTE A Cryptococcus neoformans: REVISÃO SISTEMÁTICA. Multidisciplinary Sciences Reports, 4(1), 1–18. https://doi.org/10.54038/ms.v4i1.55

Edição

Seção

IV - CIÊNCIAS DA SAÚDE
Received 2023-11-14
Accepted 2024-01-19
Published 2024-02-02

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)